去除药物后72h，取每组4只家兔(雌雄各半)麻醉处死，剪取给药部位皮肤及皮下组织，采用组织标本固定液[FAA液，组成：乙醇一甲醛一冰乙酸一纯化水(70：10：5：15，VIVIVIV)]固定，然后进行脱水、透明及浸蜡，常规石蜡包埋切片，苏木精一伊红(HE)染色，中性树胶封片，光学显微镜检查，在100倍下采集病理图像;每组剩余2只家兔在停药7d后吸入二氧化碳安乐死，取给药部位皮肤作组织病理学检查，以评价药物引起的病理改变及其恢复情况。

    2.1.4统计学分析对每天家兔刺激性评分的积分采用SPSS 16.O统计软件进行Wilcoxon(给药侧与对照侧比较)或Mann-Whitney U(供试品与市售品)检验分析。P<0.05表示差异有统计学意义。

    2.2 豚鼠皮肤过敏实验

    2.2.1 分组与给药参考2014年颁布的《药物刺激性、过敏性和溶血性研究技术指导原则》及相关文献方法[4-5]开展豚鼠皮肤过敏实验(Buehler实验)。取豚鼠60只，随机分为4组，分别为供试品组、市售品组、阳性对照组(2，4-二硝基氯苯，致敏浓度1%，激发浓度0.1%)和赋形剂对照组，其中供试品组和市售品组各20只，其余各组均为10只，雌雄各半。每次致敏前一日用剪刀去除豚鼠左侧肋腹部被毛3cmx3cm范围 ......